醫(yī)學科研標書分子生物學實驗

來源: 發(fā)布時間:2021-10-08

5)M1-Exos通過傳遞miR-155加重了EndoMT

為了研究外泌體miR-155在SCI后M1-Exos介導的BSCB破壞惡化中的作用,構建miR-155過表達(miR-155OE)和敲低(miR-155KD)BMDMs,然后分離外泌體并處理bEnd.3細胞。如圖5A和B所示,miR-155OE-Exos組TEER值***降低,通透性***增加,而miR-155KD-Exos組則相反。加入miR-155OE-Exos后,ZO-1和Occludin的熒光強度明顯降低,而miR-155KD-Exos處理后,ZO-1和Occludin的表達***增強(圖5C和D)。此外,westernblot檢測TJs蛋白的表達,結果與上述討論的結果相似(圖5E)。miR-155OE-Exos可促進細胞形態(tài)轉化,其分支更少,體細胞更長。miR-155KD-Exos處理后的結果則相反(圖5F)。miR-155OE-Exos暴露后,I型膠原蛋白、III型膠原蛋白和α-SMA蛋白水平上調,CD31蛋白水平下調,而miR-155KD-Exos作用相反(圖5G)。以上結果表明,外泌體miR-155在促進bEnd.3細胞的EndoMT中起著至關重要的作用。 采用LEfSe方法分析經DHEA和tempol處理后***改變的關鍵系統(tǒng)發(fā)育類型。醫(yī)學科研標書分子生物學實驗

5、確認PDCD4在調節(jié)Treg擴增中的作用

隨后探究了PDCD4在調節(jié)Treg擴增中的作用。如圖A-C所示,成功構建了PDCD4的過表達和干擾表達細胞系。與對照組相比,PDCD4過表達***降低了Treg細胞的擴增率,而干擾其表達則***提高了Treg細胞的擴增率。表明PDCD4是負調節(jié)Treg細胞擴增的關鍵基因。

6、**來源外泌體miR-208b影響體內化療效果和**生長隨后作者探究了**來源外泌體miR-208b體內對化療效果和**生長的影響。用慢病毒轉染CT26細胞產生miR-208b過表達和miR-208b敲低細胞系。動物實驗設計示意圖如圖7A所示,實驗采用6組(每組10只小鼠),其中3組使用奧沙利鉑,BALB/c小鼠植入CT26細胞,建立**植入模型。如圖7B-7D所示,miR-208b-OE組**生長速度較快,而中miR-208-KD組**生長明顯慢于對照組。從各組小鼠中分離出外周血CD4+T細胞,結果顯示miR-208b-OE組中PDCD4的***下調,miR-208-KD組的結果則相反(圖7E和7F)。然而,在PDCD4mRNA水平上沒有觀察到差異(圖7G)。從血清中分離出外泌體,檢測miR-208b水平(圖7H)。如預期的,miR-208b在miR-208b-OE組中***升高,而miR-208b-KD組中miR-208b水平下降(圖7I)。 推薦標書分子生物學實驗FMT處理可能促進了創(chuàng)傷性脊髓損傷后神經元的存活和軸突再生。

5、KDM6B去甲基化酶活性增加了M1相關基因的表達

抑制KDM6B的組蛋白去甲基化酶活性可抑制其靶基因的轉錄。因此,使用雙熒光素酶實驗來分析M1靶基因的啟動子活性。KDM6B的過表達特異性地刺激了促炎因子IL-6、IL-1β和TNF-α編碼基因的啟動子活性(圖5A)。相反,沉默KDM6B活性則導致他們的啟動子活性抑制,而過表達KDM6B降低了H3K27me3的水平(圖5B)。ChIP檢測顯示,與對照相比,THP-1細胞中KDM6B的過表達或敲除***增加或減少了KDM6B啟動子在不同區(qū)域的占用(圖5C-D)。與此結果一致,啟動子區(qū)域H3K27me3的募**降低或增加當KDM6B過表達或沉默時(圖5E-F)。總之,下調KDM6B可提高H3K27me3水平和促炎因子編碼基因的轉錄活性,導致抑制M1極化。

使用SmartSeq2協(xié)議對15個胎兒的單個細胞進行scRNA-seq處理(圖1 a)。

基于差異表達(DE)分析和按標準化表達***性排序的前20個標記基因。紅細胞(表達HBG1、HBA1、GYPA和ALAS2)、mk(表達FLI1、ITGA2B和GP9)、單核細胞祖細胞和單核細胞(表達CD14、MPEG1和CD33)、CD4+單核細胞、肥大細胞(表達CD63、GATA2和HDC)、漿細胞樣樹突狀細胞(pDCs;表達IL3RA,IRF8,MPEG1和JCHAIN)和另一簇高循環(huán)pDCs(表達pDC和增殖標記物;例如,MKI67)和粒細胞1、2和3(表達AZU1、MPO和PRTN3)(圖1B)單細胞分析顯示,在所有免疫表型定義的干細胞和祖細胞群體中存在***的轉錄異質性,一些表型祖細胞群體(如造血干細胞、MPPs、cmp、gmp、MEPs和CLPs)由超過10個不同的轉錄定義群體組成(圖1c).注釋了23個不同群體(圖1 d). FMT處理對脊髓損傷后小鼠腸道屏障通透性有影響。

Pearson相關分析表明circACTN4的水平與BC組織中FUBP1的表達呈正相關。此外,MYC在BC組織中高表達,并與 FUBP1的表達呈正相關。為了確認ACTN4在BC中的生物學功能,構建了ACTN4過表達和干擾質粒,為了探究 circACTN4 的作用與 ACTN4 無關,進行了共轉染實驗,結果表明 ACTN4 敲低不影響促進作用circACTN4 對 MYC 轉錄的過度表達,ACTN4 的上調并沒有逆轉 qRT-PCR 和蛋白質印跡對 circACTN4 敲低對 MYC 表達的抑制作用。WB結果表明circACTN4可以促進MYC及其下游蛋白CDK4和CCND2的表達。這些數(shù)據(jù)表明 circACTN4 可以與 FUBP1 結合并促進 MYC 的表達。circRNAs在**的發(fā)展和進展中發(fā)揮著重要的調控作用.推薦標書地區(qū)科學基金

腸道緊密連接已被證明與腸道屏障完整性有關。醫(yī)學科研標書分子生物學實驗

為了進一步探討m6A修飾在FZD7 mRNA中的作用,我們構建了三種FZD7突變體,其中一種突變體為***個m6A峰(FZD7- peak1 Mut),另一種突變體為第二個m6A峰(FZD7- Peak2 Mut),以及雙突變體(FZD7- peak1 &2 Mut;圖5)。與野生型相比FZD7 (FZD7-WT)突變在第二m6A峰和雙m6A峰值突變(FZD7-Peak2傻瓜和FZD7-Peak1&2Mut)野生型YTHDF1沒有反應過度(7和8)圖5 h,面板,建議第二m6A峰FZD7 YTHDF1的主要網(wǎng)站的監(jiān)管。同樣,m6a結合能力的喪失完全消除了YTHDF1促進FZD7 mRNA翻譯的作用(圖5H,圖9 12)。這些結果表明YTHDF1介導的FZD7的翻譯控制依賴于m6A修飾。醫(yī)學科研標書分子生物學實驗

公司特色是以各式高通量二代測序為基礎,利用生物數(shù)據(jù)信息分析手段,通過英拜生物自有的分子、病理以及細胞實驗平臺,提供課題整體設計外包、撰寫SCI論文一站式服務。公司實驗平臺落座在漕河涇開發(fā)區(qū)浦江園區(qū),實驗平臺開放參觀,客戶可隨時參觀實驗并參與實驗課題的進度,保證您的實驗是在您的指導下完成。

1.整體課題外包服務:RNA甲基化研究專題,外泌體研究專題,wnt/VEGF/toll等經典通路研究,設計的課題均具有后續(xù)實驗課題的延展性,為您的標書奠定較好的基礎

2.標書申請:提供標書課題設計、撰寫,標書部分基礎實驗的開展,設計的標書均符合科研前沿熱點,中標率很高。

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4.二代測序:轉錄組測序、smallRNA測序、snoRNA測序、TRF測序

5.芯片:信號通路pcr芯片蛋白芯片

6.表觀遺傳實驗:DNA甲基化實驗(BSP,MSP,焦磷酸測序),RNA甲基化實驗

7.實時定量PCR(mRNA,LncRNA,microRNA,circRNA),WB,RNA功能驗證實驗(靶基因驗證,過表達,干擾),基因突變及SNP檢測,F(xiàn)ISH,RNA-PULLdown,rip,chip實驗以及細胞增殖,凋亡,流式等細胞功能學實驗

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