由于circMAPK1在GC細(xì)胞系中穩(wěn)定表達(dá),我們推測circMAPK1可能是一種適合GC診斷或預(yù)后的標(biāo)志物。qRT-PCR顯示circMAPK1在*組織中的表達(dá)低于匹配的非*組織(圖1m)。Kaplan-Meier生存分析顯示胃*組織中circMAPK1水平較高的患者總生存期***延長(圖1n)。綜上所述,circMAPK1是一種穩(wěn)定表達(dá)的circRNA,可作為有效的診斷和預(yù)后標(biāo)志物,值得進(jìn)一步研究。
2)CircMAPK1在體外抑制GC細(xì)胞的增殖和遷移
為了研究circMAPK1在GC中的生物學(xué)功能,我們進(jìn)行了一系列細(xì)胞實驗。隨CCK8實驗(圖2a)、集落形成實驗(圖2b)和EdU實驗(圖2c)結(jié)果表明,沉默circMAPK1可***增強GC細(xì)胞的增殖能力。我們發(fā)現(xiàn)circMAPK1的減少增加了S期GC細(xì)胞的數(shù)量(圖2d)。Transwell(圖2e)試驗顯示circMAPK1的干擾促進(jìn)了GC細(xì)胞的遷移。此外,過表達(dá)circMAPK1***削弱了GC細(xì)胞的增殖能力。同樣,過表達(dá)circMAPK1時,S期GC細(xì)胞的數(shù)量***減少,細(xì)胞遷移受到抑制。綜上所述,circMAPK1在GC細(xì)胞的增殖和遷移中起著重要作用。 血清代謝產(chǎn)物的豐度也發(fā)生了***變化.神經(jīng)元損傷標(biāo)書中標(biāo)率高
作為一種典型的G蛋白偶聯(lián)受體, DRD2的內(nèi)化誘導(dǎo)其受體β-arrestin2在質(zhì)膜上的募集,并增加其與β-arrestin2的親和力。LPS和CM刺激了DRD2和β-arrestin2的蛋白-蛋白結(jié)合(圖5F-G)。同時,通過IF染色觀察到,經(jīng)過LPS處理后,DRD2似乎在細(xì)胞質(zhì)中與p-p65結(jié)合(圖5A), Co-IP和IB進(jìn)一步證實了這種結(jié)合(圖5F)。據(jù)報道,β-arrestin2信號的***會破壞星形膠質(zhì)細(xì)胞中TAK1-Tab1的結(jié)合,而這種結(jié)合對于TAK1的***至關(guān)重要。本研究還證實,內(nèi)化的DRD2可以促進(jìn)TAB1與β-arrestin2的結(jié)合,削弱TAB1與TAK1的結(jié)合(圖5H)。綜上所述,DRD2***的β-arrestin2通過競爭性地結(jié)合TAB1來拮抗TAK1的磷酸化。rip標(biāo)書上海腸道微生物群和循環(huán)代謝產(chǎn)物之間的聯(lián)系.
乳腺*(BrCa)是世界范圍內(nèi)**常見的**,診斷為IV期患者的5年相對生存率有所下降。晚期BrCa被認(rèn)為是不可***的,目前仍缺乏有效的***策略。識別和表征新的**抑制基因?qū)τ诮⒂行У耐砥贐rCa預(yù)后生物標(biāo)志物或***靶點非常重要。2021年3月發(fā)表于Theranostics(IF=11.556)的文獻(xiàn)“Tumor suppressor DRD2 facilitates M1 macrophages and restricts NF-κB signaling to trigger pyroptosis in breast cancer”對此展開了研究。在本文中,在BrCa中,DRD2被發(fā)現(xiàn)由于啟動子甲基化而下調(diào)。DRD2的高表達(dá)與更長的生存時間正相關(guān),尤其是在HER2陽性患者中。DRD2還能促進(jìn)BrCa細(xì)胞對紫杉醇的敏感性。DRD2異位表達(dá)***抑制BrCa**發(fā)生。在體內(nèi)和體外,DRD2也能誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡和壞死。DRD2通過與β-arrestin2、DDX5和eEF1A2相互作用抑制NF-κB信號通路的***。有趣的是,DRD2還調(diào)節(jié)微環(huán)境,促進(jìn)巨噬細(xì)胞M1極化,并觸發(fā)GSDME執(zhí)行的焦亡。
一、LC3陽性囊泡在質(zhì)膜損傷后在修復(fù)部位積聚
用激光照射*細(xì)胞MCF7,致使細(xì)胞膜上形成小孔。使用膜不可滲透的FM1-43染料測量膜完整性,發(fā)現(xiàn)在Ca2+存在下,細(xì)胞能夠在20到30s內(nèi)修復(fù)它們的質(zhì)膜(Fig.1,AandB,left);在缺乏Ca2+的培養(yǎng)基中受損的細(xì)胞無法修復(fù)并繼續(xù)吸收細(xì)胞不可滲透的染料(Fig.1B,right)。使用穩(wěn)定表達(dá)融合蛋白增強型綠色熒光蛋白(eGFP)-LC3的MCF7細(xì)胞研究激光照射后自噬是否參與該過程,結(jié)果顯示,LC3陽性點在損傷后大約8-10min開始在修復(fù)部位形成(Fig.1C);在未損傷區(qū)域中LC3陽性點未增加(Fig.1D);LC3依賴于ATG7(Fig.1E-H)。 CircRNA在NSCLC發(fā)生、發(fā)展中誘導(dǎo)免疫反應(yīng)的行為和機制尚未見報道.
六、改進(jìn)分選策略以分離胚胎HSCs/MPPs
研究者基于細(xì)胞表面標(biāo)記設(shè)計了一種針對HSCs / MPP的新的熒光***細(xì)胞分選策略(簡稱CD-REF),使用CD-REF分選板對股骨BM細(xì)胞進(jìn)行分選,結(jié)果顯示標(biāo)記為HSCs / MPP和HSCs / MPPs-Cycle簇的CD-REF細(xì)胞約占88%。為了評估CD-REF細(xì)胞譜系輸出的分化潛力和穩(wěn)健性,研究人員在小鼠MS5飼養(yǎng)層或更具生理相關(guān)性的人類胎兒間充質(zhì)干細(xì)胞(fMSCs)上對三個胎兒的單個細(xì)胞進(jìn)行了分選,結(jié)果顯示MS5和fMSCs上分別存在著四系、三系、雙系、單系和未分化的譜系集落。接下來,又對單個CD-REF和免疫表型HSCs進(jìn)行了分類,結(jié)果顯示CD-REF在胎兒肝臟和骨髓中富集了多譜系輸出的細(xì)胞群,且CD-REF細(xì)胞具有與表型HSCs相當(dāng)?shù)亩酀撃苄院妥V系輸出能力,這與前述分化軌跡探究一致,再次驗證CD-REF**了高富集的HSC/MPPs群體。 我們進(jìn)行了熒光素酶報告基因檢測.浙江褪黑素標(biāo)書
與未接受FMT***的受傷小鼠相比接受FMT***的小鼠表現(xiàn)出相對更大的運動恢復(fù)。神經(jīng)元損傷標(biāo)書中標(biāo)率高
3)DRD2重新編碼MφM1表型,下調(diào)IL-6和IL-10
據(jù)報道,DRD2可調(diào)節(jié)M1的極化。結(jié)果顯示,在DRD2表達(dá)水平較高的BrCa組織中,M1Mφ的浸潤增加,M2Mφ的浸潤減少(圖3A)。為進(jìn)一步研究DRD2對TAMs的調(diào)控作用,構(gòu)建了BrCa與Mφ共培養(yǎng)體系。當(dāng)Mφ與表達(dá)DRD2的BrCa細(xì)胞共培養(yǎng)時,qRT-PCR顯示M1表型標(biāo)記增加,M2Mφ標(biāo)記下調(diào)(圖3B-C)。qRT-PCR也證實了載體轉(zhuǎn)染的BrCa細(xì)胞將Mφ調(diào)節(jié)為M2型(圖3C)[12]。WB結(jié)果顯示,表達(dá)DRD2的BrCa細(xì)胞上調(diào)M1標(biāo)記iNOS,下調(diào)M2標(biāo)記CD206(圖3D)。IF染色顯示,與表達(dá)DRD2的**細(xì)胞共培養(yǎng)后,Mφ表現(xiàn)為M1表型(圖3E)。上述結(jié)果表明,BrCa中的DRD2具有將Mφ重新編碼為M1表型的能力。為了探索使Mφ向M1表型分化的關(guān)鍵調(diào)控因子,我們進(jìn)行了細(xì)胞因子陣列分析。結(jié)果表明,TNF-α和兩種誘導(dǎo)M1極化的經(jīng)典細(xì)胞因子IFNγ均未增加。而與Mφ共培養(yǎng)后,DRD2***下調(diào)IL-6和IL-10(圖3F)。分析熒光值,進(jìn)一步證實IL-6和IL-10下調(diào)(圖3F)。因此,DRD2可以將Mφ重新編碼為M1表型,并在crosstalk過程中***下調(diào)IL-6和IL-10。 神經(jīng)元損傷標(biāo)書中標(biāo)率高
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1.整體課題外包服務(wù):RNA甲基化研究專題,外泌體研究專題,wnt/VEGF/toll等經(jīng)典通路研究,設(shè)計的課題均具有后續(xù)實驗課題的延展性,為您的標(biāo)書奠定較好的基礎(chǔ)
2.標(biāo)書申請:提供標(biāo)書課題設(shè)計、撰寫,標(biāo)書部分基礎(chǔ)實驗的開展,設(shè)計的標(biāo)書均符合科研前沿?zé)狳c,中標(biāo)率很高。
3.提供熱點**文獻(xiàn)技術(shù)支持,探討科研前沿?zé)狳c研究:trfRNA,DNA/RNA甲基化,外泌體,自噬,WNT等相關(guān)研究
4.二代測序:轉(zhuǎn)錄組測序、smallRNA測序、snoRNA測序、TRF測序
5.芯片:信號通路pcr芯片蛋白芯片
6.表觀遺傳實驗:DNA甲基化實驗(BSP,MSP,焦磷酸測序),RNA甲基化實驗
7.實時定量PCR(mRNA,LncRNA,microRNA,circRNA),WB,RNA功能驗證實驗(靶基因驗證,過表達(dá),干擾),基因突變及SNP檢測,F(xiàn)ISH,RNA-PULLdown,rip,chip實驗以及細(xì)胞增殖,凋亡,流式等細(xì)胞功能學(xué)實驗